取材及固定：
组织样本：
样品尺寸要求：1~2 mm³ 左右。
加入 2.5% 戊二醛，于 4°C 保存。
对于特定形态的组织样品（如肠道等），取材时至少保证组织块一个面的厚度为 1 mm。
对有切片方向要求的组织样品，需标识切片横纵轴方向。
细胞/细菌样本：
细胞团要求至少半个绿豆大小。
悬浮培养细胞/细菌，离心收集，弃去培养液，加入 2.5% 戊二醛，用牙签拨散细胞团，于 4°C 保存。
对于贴壁细胞，先倒去培养液，加入 2.5% 戊二醛，4°C 固定 15 分钟，用细胞刮刮下，离心收集（固定液保留），于 4°C 保存。
固定时间：至少 4 个小时。
饿酸固定：
将用戊二醛固定的细胞或组织，经 0.1 M 磷酸缓冲液（pH 7.2）漂洗 3 次，每次 15 分钟。
再用 1% 饿酸•0.1 M 磷酸缓冲液（pH 7.2）室温（20°C）固定 2 小时（固定时间因样品不同而适当调整）。
然后再经 0.1 M 磷酸缓冲液（pH 7.2）漂洗 3 次，每次 15 分钟。
脱水：
样品脱水经 30%、50%、70%、80%、85%、90%、95%、100%（两次）酒精梯度脱水，每次 15~20 分钟（含水量多、细胞膜厚的样品可适当延长脱水时间）。
渗透：
渗透剂依次为丙酮：环氧树脂（2：1）、丙酮：环氧树脂（1：1）、环氧树脂，37°C 温箱内，每次渗透 8~12 小时。
包埋：
将渗透好的样品放入胶囊或包埋板中，加入包埋剂环氧树脂，在 60°C 温箱中聚合 48 小时。
超薄切片：
切片厚度：80~100 nm。
双染色：
铀铅双染色（2% 醋酸铀饱和水溶液，枸橼酸铅，室温染色 15 分钟），切片室温干燥过夜，电镜观察。
电镜型号：
TEM Hitachi HT7700
产地：Japan